Развитие печени Plasmodium falciparum
ДомДом > Новости > Развитие печени Plasmodium falciparum

Развитие печени Plasmodium falciparum

May 09, 2024

Nature Communications, том 14, номер статьи: 4631 (2023) Цитировать эту статью

1161 Доступов

13 Альтметрика

Подробности о метриках

Развитие паразита Plasmodium falciparum (Pf) в печени представляет собой начальный этап жизненного цикла человека-хозяина после укуса комара, инфицированного Pf. Хотя это привлекательная стадия для прерывания жизненного цикла, понимание взаимодействия паразита и гепатоцита недостаточно из-за ограничений существующих моделей in vitro. Мы исследуем пригодность гепатоцитарных органоидов (HepOrgs) для развития Pf и показываем, что эти клетки обеспечивают паразитарную инвазию, дифференцировку и созревание различных штаммов Pf. Секвенирование одноклеточной информационной РНК (scRNAseq) Pf-инфицированных клеток HepOrg выявило 80 Pf-транскриптов, активность которых повышалась на 5-й день после заражения. Обнаружены изменения профиля транскрипции, затрагивающие различные метаболические пути в гепатоцитах с высокой активностью транскриптов скэвенджер-рецептора B1 (SR-B1). Новое функциональное участие в созревании шизонтов подтверждено в свежих первичных гепатоцитах. Таким образом, HepOrgs обеспечивает прочную основу для универсальной модели in vitro для стадий Pf в печени, включающей фундаментальные биологические исследования и ускоренную клиническую разработку новых инструментов для борьбы с малярией.

Малярия является одним из основных инфекционных заболеваний во всем мире, ответственным за большое и растущее бремя болезней, особенно в странах Африки к югу от Сахары: в 2021 году было зарегистрировано 247 миллионов случаев заболевания и 619 000 смертей11. Хотя некоторые виды Plasmodium могут поражать людей, большая часть бремени болезней вызвана малярией. Плазмодий фальципарум (Pf). Малярией заражается небольшое количество печеночных инфекционных паразитов Pf (спорозоитов), которые вводятся в кожу человека-хозяина инфицированной самкой комара во время приема пищи с кровью. Максимум в течение нескольких часов некоторое количество этих спорозоитов попадает в печень через кровоток и проникает в гепатоциты. После клинически молчаливого семидневного периода внутриклеточной репликации и дифференцировки каждый спорозоит может дать начало примерно 10 000 дочерним паразитам, заражающим кровь (мерозоитам). Эти мерозоиты высвобождаются из разорвавшихся гепатоцитов в кровоток, где они начинают свой 48-часовой цикл бесполой репликации в циркулирующих эритроцитах, ответственных за клиническое заболевание.

Учитывая небольшое количество инъецированных спорозоитов, эта ранняя фаза заражения человека-хозяина представляет собой относительную уязвимую и критическую стадию жизненного цикла паразита, прежде чем во время малярии в кровяной стадии образуется большое количество паразитов. Таким образом, наличие высокоэффективных лекарств и/или вакцин, нацеленных на эти стадии паразитов в печени, было бы большим преимуществом для борьбы с малярией и ее ликвидации. Основным фактором, способствующим этому, является отсутствие понимания основ биологии динамического взаимодействия между развивающимися паразитами в инвазированных гепатоцитах. Лучше всего это сделать, используя объективное исследование транскриптома/протеома хозяина и паразита во время процесса заражения. Главным камнем преткновения является отсутствие репрезентативных культур клеток печени in vitro, обеспечивающих полное развитие Pf. Криоконсервированные первичные гепатоциты человека использовались, но их допустимость варьируется и низкая, что приводит к недостаточному материалу для такого анализа2. Альтернативно, доступ и наличие свежевыделенных первичных гепатоцитов человека ограничены. Гепатоциты из обоих источников можно поддерживать в культуре только в течение ограниченного количества дней. Наконец, использование линий печеночных клеток, включая HC-04, в основном ограничивается изучением самых ранних событий взаимодействия паразит-гепатоциты (т.е. перемещения и инвазии), хотя сообщалось о полном развитии3.

Органоиды представляют собой трехмерные структуры, полученные из стволовых клеток или первичных тканей и повторяющие ключевые архитектурные и функциональные аспекты исследуемого органа/ткани. Полученные из взрослых стволовых клеток, эти структуры in vitro могут расширяться в течение длительных периодов времени4. Недавно мы разработали протокол выращивания органоидов из гепатоцитов человека5. Эти органоиды можно получить из отдельных гепатоцитов и выращивать в течение нескольких месяцев, сохраняя при этом ключевые морфологические, функциональные особенности и особенности экспрессии генов. Транскрипционные профили органоидов напоминают пролиферирующие гепатоциты после частичной гепатэктомии. Органоиды гепатоцитов человека (HepOrgs) активно размножаются после приживления мышам. Мы наблюдали обратную корреляцию между возрастом донора и продолжительностью фазы экспоненциального расширения. Фактически, фетальные гепатоциты дают органоидные линии, которые могут расширяться до бесконечности, но при этом очень напоминают первичные гепатоциты (HuHeps)6.

100 schizonts from three biological replicates with standard deviation. For the HepOrg A, each point represents the average of median of KK2, KIFM, KU1 where >25 schizonts are measured for each line at each time point. For HepOrg B, each point represents the average of median of KIFM, KK2, KK3 and KU1 where > 100 schizonts are measured for each line at each time point. Areas under the schizont growth curves of Huheps and respectively HepOrg A (p = 0.001; n = 4 donors) and HepOrg B (p = 0.0002; n = 4 donors) were significantly different (Welch t-test, two-sided). C Confocal images of HepOrgs and D HuHeps at day 5 p.i. showing the expression of typical liver-stage markers; from top to bottom: Circumsporozoite protein (CSP), Exported Protein 2 (EXP2), Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) and human Glutamine Synthetase (hGS). Scale bar is 25 microns. E Confocal images of Merozoite Surface Protein 1 (PfMSP1) in schizonts of HuHeps (top) and HepOrgs (bottom) on day 7-9 p.i. Scale bar is 25 microns. For C, D and E, these stainings have been repeated in three independent experiments and here a representative image is shown for each staining combination. F Average percentage with standard deviation of PfMSP1 positive schizonts from HepOrg B (n = 4; KIFM, KK2, KK3, KU1) and HuHep (n = 3) assessed >100 schizonts per line per time point. See also Fig. S1./p> 2.22−16; HMGCR, p = 0.0062; G6PC, p = 0.0011; PCSK9, p = 2−10; APOB, p > 2.22−16; PPARA, p > 2.22−16; LSS, p = 1.3−7; MTTP, p > 2.22−16. Box plots in C indicate the median (Q2), 25th percentile (Q1) and 75th percentile (Q3) with the whiskers showing the minimum (Q1 – 1.5 × interquartile range) and maximum (Q3 + 1.5 × interquartile range). See also Supplementary Data 2 and 3. Source data are provided as a Source data file and Supplementary Data 5./p>50 Pf transcripts. Infected HepOrg cells were defined as having more than 1 Pf transcript./p>